Сальмонеллез материал для исследования

Дополнительные объекты исследования — остатки пищи, употреблявшейся заболевшими, исходные продукты и полуфабрикаты, использованные для ее приготовления; суточные пробы готовой пищи, корма животного и растительного происхождения, смывы с различного оборудования и других предметов, подозреваемых в качестве фактора передачи возбудителя. В особых случаях вспышки сальмонеллезов диагноз может быть поставлен на основе клинико-эпидемиологических данных с дополнительными позитивными результатами серологических и молекулярно-генетических исследований.

Сальмонеллез

Цена на этот документ пока неизвестна. Нажмите кнопку "Купить" и сделайте заказ, и мы пришлем вам цену. Распространяем нормативную документацию с года. Пробиваем чеки, платим налоги, принимаем к оплате все законные формы платежей без дополнительных процентов. Наши клиенты защищены Законом. Наши цены ниже, чем в других местах, потому что мы работаем напрямую с поставщиками документов. Предназначены для специалистов лабораторий, занимающихся диагностикой сальмонеллезов и обнаружением сальмонелл в пищевых продуктах, кормах для животных и других объектах внешней среды.

Скачать PDF. Организация лабораторных исследований при выяснении возникновения групповых заболеваний сальмонеллезами. Приложение 4. Первичная идентификация энтеробактерий по биохимическим реакциям в комбинированной среде и выбор тестов для установления родовой принадлежности. Приложение 5. Наставление по применению наборов сывороток сальмонеллезных О-комплексных и монорецепторных О- и Н-агглютинирующих для экспресс-идентификации сальмонелл по реакции агглютинации РА на стекле.

Приложение 6. Наставление по применению диагностических агглютинирующих адсорбированных сальмонеллезных О- и Н-сывороток. Приложение 7. Временное наставление по применению эритроцитарного антигена для диагностики пуллороза-тифа птиц по кровекапальной реакции непрямой гемагглютинации ККРНГА.

Приложение 8. Постановка реакции пассивной гемагглютинации РПГА с цистеиновой пробой для диагностики сальмонеллезов человека, выявления и дифференциации различных форм бактерионосительства.

Приложение 9. Рекомендуемый перечень объектов, подлежащих плановым исследованиям в порядке эпидемиологического и эпизоотологического надзора, и частота их обследования. Чтобы бесплатно скачать этот документ в формате PDF, поддержите наш сайт и нажмите кнопку:. Методические указания разработаны В, Л, Черкасским, С.

Рожновой, Ю. Антоновым, В, В. Йоповцевым Цент-p. Предназначены для специалистов лабораторий- занимающихся диагностикой сальмонеллезов и обнаружением сальмонелл в пищевых продуктах, кормах для животных и других объектах внешней среды.

Ответственные за выпуск: С. Рожнова и В. В, Поповцев. Местным органам здравоохранения и ветеринарии разрешается размножить данные указания в необходимом количестве экземпляров. Ршх 1. Дифференциально диагностические среды инкубирование ч. Одновременно изучают морфологию и тинкториальные свойства бактерий, готовя мазки и окрашивая их по Граму. При отсутствии подозрительных колоний чашки Петри с вис-мут-сульфитным агаром оставляют в термостате еще на 24 ч, после чего просматривают и при обнаружении подозрительных колоний продолжают исследование.

Затем изучают изменение среды. Дополнительно делают высев на МПА для постановки реакции агглютинации. При обнаружении изменений комбинированной среды, позволяющих заподозрить наличие сальмонелл, дальнейшее исследование материалов от человека проводят согласно таблице приложение 4.

По результатам реакции агглютинации дают ответ, исследование прекращают. Перечень объектов, исследуемых материалов и кратность исследования приведены в приложении 9.

Дальнейшее расследование проводят совместно обе службы. Разрабатывают комплекс противоэпидемических и противозпи-зоотических мероприятий, направленный на ликвидацию заболевания. Несмотря на выраженную полипатогенность, в большинстве случаев у человека заболевание вызывает S. Чаще такое явление отмечают у птиц. Последний имеет две фазы. При подозрении на хроническую форму кроме перечисленных органов от телят берут измененные участки легких, от кур -измененные фолликулы яичника.

Для установления сальмонеллоноштельства исследуют печень, селезенку, фолликулы. Материалом для прижизненной диагностики служат фекалии больных животных.

В случае невозможности доставки в установленные сроки материал посылают в консервированном виде приложение 3. При отборе проб необходимо исключить возможность контаминации их за счет смежных областей кожи, других органов, внешней среды и т. Не принимается для исследования на сальмонеллоносительство материал, взятый на дому в отсутствие медицинского работника. Взятую кровь высевают у постели больного.

У детей до одного года кровь берут в доступных количествах из пальца, пятки или мочки уха. Кислая реакция, белесоватый оттенок, наличие хлопьев свидетельствуют о примеси желудочного сока и делают материал непригодным для бактериологического исследования.

Мочу для исследования собирают после тщательного туалета. Допускается высев нативного материала. Пробу мл помещают в стерильную пробирку и доставляют в лабораторию, предохраняя материал от замораживания можно использовать термос. Масса пробы должна. ЗА Пробы жидких и полужидких продуктов и кормов супы, соусы, заменитель цельною молока - ЗЦМ отбирают после тщательного перемешивания в количестве около г.

Молочные продукты заводского приготовления доставляют в лабораторию в оригинальной упаковке, прочие - в объеме до мл. Суточные пробы направляют для исследования непосредственно в той посуде, в которой они хранились в холодильнике. Допускается доставка этих проб в стерильных банках, куда их перекладывают с соблюдением асептики. Отбор проб комбикормов и сырья, используемого при его производстве кроме зерна , проводят по ГОСТ Методы отбора проб", зерна - по ГОСТ Методы бактериологического анализа".

Отбор проб смывов осуществляют стерильными ватными или ватно-марлевыми тампонами. Тампоны монтируют на деревянной. Затем в каждую пробирку наливают 2 мл предварительной среды обогащения -забуференной пептонной воды pH 7,0 приложение 3. Смывы берут с площади не менее см 2 , если нет специальных указаний для данного объекта.

При взятии смывов с яичной скорлупы одни тампон используют для исследования 10 яиц. Обработка посуды дезинфицирующими средствами не допускается. Подготовка материалов к исследованию. Доставленные в лабораторию пробы высевают в пробирки колбы со средой обогащения и на чашки Петри с дифференциально-диагностическими средами. Исследуемый материал?

Засеянные пробирки ш чашки помещают в термостат при 37 Т на ч. Операционный и секционный материал массой не менее 20 г растирают в ступках и высевают в одну из сред обогащения предпочтительнее селенитовую или магниевую в отношении При диагностике сальмонеллезов животных исследуемый материал - паренхиматозные органы кроме печени? В связи с тем что S. Одновременно проводят микроскопическое исследование методом световой микроскопии. Мазки-отпечатки делают из тех же орга-лов и окрашивают по Граму.

Клинический материал высевают на две-три дифференциально-диагностические среды комбинируя высоко- и низко-селективные среды и в пробирки со средой обогащения одновременно. Испражнения, достав-. Рвотные массы, осадки промывных вод желудка и мочи после центрифугирования высевают в среды обогащения.

Спинномозговую жидкость высевают в желчный бульон для обогащения и. Крем, сливочное масло, мороженое и т. При исследовании яиц скорлупу обрабатывают спиртом и обжигают, после чего яйца разбивают и отделяют желток в стерильную посуду, объединяя пять желтков одной пробы. Желтки гомогенизируют и используют для посева. Пробы мяса животных и птиц, яичного порошка, меланжа и консервы в закрытых банках исследуют согласно действующим ГОСТам. Пробы кормов в предварительной среде обогащения инкубируют 5 ч в термостате, после чего взбалтывают, отстаивают.

Для исследования молока лучше использовать среду Мюллера. При расследовании вспышек, болезни целесообразно проводить параллельный высев исследуемого материала на две среды обогащения. Через сутки инкубирования в термостате делают высев из второй среды обогащения на дифференциально-диагностические среды.

Заказать документы. Лабораторная диагностика сальмонеллезов человека и животных, обнаружение сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды. Способы доставки Срочная курьерская доставка дня Курьерская доставка 7 дней Самовывоз из московского офиса Почта РФ.

Консультация по подбору ГОСТа бесплатно. Дата введения Скачать PDF Закрыть.

Основу диагностики поражений, выявления носительства и изучения обсеменённости объектов окружающей среды сальмонеллами составляют бактериологические исследования. Материалом для исследования служат испражнения, рвотные массы, промывные воды желудка, кровь и мочу.

Лабораторная диагностика сальмонеллеза

Основу диагностики поражений, выявления носительства и изучения обсеменённости объектов окружающей среды сальмонеллами составляют бактериологические исследования. Материалом для исследования служат испражнения, рвотные массы, промывные воды желудка, кровь и мочу. При брюшном тифе также проводят забор проб из кожных высыпаний, желчи, содержимого двенадцатиперстной кишки, СМЖ и секционного материала.

Дополнительные объекты исследования на наличие сальмонелл — остатки пищи, употреблявшейся заболевшими, исходные продукты; суточные пробы готовой нищи; корма животного и растительного происхождения; смывы с различного оборудования и других предметов, подозреваемых в качестве фактора передачи возбудителя. Оптимальным сроком для проведения бактериологических исследований при гастроинтести-нальных формах сальмонеллёзов считают первые дни заболевания, при генерализованных формах — конец 2-й и начало 3-й недели.

При изучении различных материалов испражнения, кровь, моча, жёлчь и др. Дифференциально-диагностические среды для высевов со сред обогащения бывают высокоселективными например, висмут-сульфитный агар , среднеселективными среда Плоскирева и низкоселективными среды Эндо и Левина. На висмут-сульфитном агаре возбудитель паратифа А образует зеленоватые колонии. Биохимические и культуральные свойства определяют на минимальном дифференцирующем ряду. На плотных средах возбудитель паратифа Б может давать феномен валообразования.

На них сальмонеллы образуют колонии красного цвета с чёрным центром за счёт образования H 2 S. Серологические исследования при сальмонеллезе. Лечение и профилактика сальмонеллеза, брюшного тифа, паратифа. Информация на сайте подлежит консультации лечащим врачом и не заменяет очной консультации с ним.

Связь с нами: Медунивер - поиск Форум анонимных консультаций Контакты для вопросов Пользовательское соглашение. МедУнивер - MedUniver. Все разделы сайта. Видео по медицине. Книги по медицине. Форум врачей. Видео уроки. Общая микробиология.

Общая бактериология. Экология микробов. Учение об инфекции. Лечение инфекций. Методы диагностики. Грам "-" бактерии. Санитарная микробиология. Видео по микробиологии. Книги по микробиологии. Оглавление темы "Сальмонеллезы. Брюшной тиф.

Патогенез сальмонеллеза. Патогенность сальмонелл. Патогенез поражения сальмонеллами. Токсины сальмонелл. Клиника сальмонеллезов. Клиника брюшного тифа. Признаки брюшного тифа. Сыпь при брюшном тифе.

Клиника паратифа. Признаки паратифа. Сыпь при паратифе. Симптомы паратифа. Сальмонеллезный гастроэнтерит. Возбудители сальмонеллезного гастроентерита. Источник заражения сальмонеллезом. Формы сальмонеллезного гастроэнтерита. Диагностика сальмонеллеза. Микробиологическая диагностика сальмонелл. Выделение возбудителей сальмонеллеза. Феномен валообразования. Определение антигенной структуры сальмонелл. История иерсиний. Свойства иерсиний. Признаки иерсиний. Распространенность иерсиний. Эпидемиология иерсиний.

Возбудитель чумы. Иерсиния пестис. Yersinia pestis. История чумы. Эпидемии чумы. Распространенность чумы. Эпидемиология чумы. Эпидемия чумы. Эпизоотии чумы. Передача чумы человеку. Природные очаги чумы. Устойчивость возбудителя чумы. Морфология чумы. Тинкториальные свойства чумы. Палочка Китазато. Культуральные свойства возбудителя чумы.

На них сальмонеллы образуют колонии красного цвета с чёрным центром за счёт образования H 2 S - Также рекомендуем " Определение антигенной структуры сальмонелл. Медунивер - поиск Чат в Telegram Мы в YouTube Мы в Вконтакте Мы в Instagram Форум консультаций наших врачей Контакты и реклама Информация на сайте подлежит консультации лечащим врачом и не заменяет очной консультации с ним.

Дополнительные объекты исследования — остатки пищи, употреблявшейся заболевшими, исходные продукты и полуфабрикаты, использованные для ее приготовления; суточные пробы готовой пищи, корма животного и растительного происхождения, смывы с различного оборудования и других предметов, подозреваемых в качестве фактора передачи возбудителя.

В особых случаях вспышки сальмонеллезов диагноз может быть поставлен на основе клинико-эпидемиологических данных с дополнительными позитивными результатами серологических и молекулярно-генетических исследований. Основу диагностики поражений, вызываемых сальмонеллами, выявления носительства, изучения обсемененности объектов окружающей среды составляют бактериологические исследования, проводимые по стандартной схеме.

Оптимальными сроками для проведения бактериологических исследований при гастроинтестинальных формах сальмонеллезов считают первые дни заболевания, при генерализованных формах — конец второй и начало третьей недели.

Для исследования на наличие сальмонелл отбирают испражнения, рвотные массы и промывные воды желудка, кровь, мочу, а при наличии специальных показаний - желчь, дуоденальное содержимое, спинномозговую жидкость и секционный материал. Патологический материал следует доставлять в лабораторию в возможно короткий срок, но не позднее 12 ч после отбора, испражнения фекалии — не позднее 3—4 ч; кровь высевают у постели больного.

В случае невозможности доставки в установленные сроки материал посылают в консерванте или в транспортной среде. При отборе проб необходимо исключить возможность контаминации их за счет смежных областей кожи, других органов, внешней среды и т. Испражнения собирают сразу после дефекации с помощью стерильной стеклянной палочки или деревянного шпателя. При наличии патологических примесей слизь, кровь, гной и т.

Тампон помещают в пробирку с консервантом. При профилактических обследованиях здоровых лиц на сальмонеллоносительство накануне взятия испражнений для исследования можно применить солевое слабительное 25—30 г магнезии сульфата - MgS04 , растворенное в теплой воде.

Не принимается для исследования на сальмонеллоносительство материал, взятый на дому в отсутствии медицинского работника. Кровь для исследования берут в начале заболевания, а также повторно в период лихорадки или в разгар рецидивов стерильным шприцем из локтевой вены в объеме 2—10 мл в зависимости от возраста пациента ; в более поздние сроки или при слабовыраженной клинической картине - 15—20 мл.

Взятую кровь высевают у постели больного. У детей до одного года кровь берут в доступных количествах из пальца, пятки или мочки уха. Рвотные массы и промывные воды желудка отбирают при заболевании, сопровождающемся соответствующей симптоматикой, в объеме до мл.

Для исследования используют первые порции промывных вод, полученные без применения бактерицидных средств. В случае невозможности центрифугирования допускается высев нативного материала. Желчь дуоденальное содержимое собирают в стерильные пробирки. При этом отдельно собирают дуоденальное содержимое, пузырную желчь и желчь из желчных протоков порции А, В и С соответственно. Кислая реакция, белесоватый оттенок, наличие хлопьев свидетельствуют о примеси желудочного сока и делают материал непригодным для бактериологического исследования.

Мочу для исследования собирают после тщательного туалета. Первую порцию мочи не берут для анализа, остальную в количестве 20—30 мл собирают в стерильную посуду и доставляют в лабораторию. Для исследования используют осадок. Допускается высев нативного материала. Спинномозговая жидкость подлежит исследованию при наличии менингеального или менингоэнцефалитического синдромов.

Пробу 3—5 мл помещают в стерильную пробирку и доставляют в лабораторию, предохраняя материал от замораживания можно использовать термос. Операционный и секционный материал для исследования отбирают в случае необходимости при оперативных вмешательствах или на месте вскрытия.

Масса пробы должна быть не менее 20 г. Доставленные в лабораторию образцы клинического материала подготавливают к посеву в среды обогащения и на дифференциально-диагностические среды. Эффективность проводимого исследования, направленного на выделение сальмонелл из разных материалов, в первую очередь зависит от применения соответствующих сред обогащения и адекватных дифференциально-диагностических сред.

Черные с бесцветным ободком за исключением S. Черные, среда под колонией прокрашивается. Некоторые серовары сальмонелл S. После подготовки материала от больных к исследованию производят его посев на среду обогащения. При этом можно использовать как среды отечественного производства, так и импортные, разрешенные к реализации в России. При необходимости допускается приготовление некоторых сред в лабораторных условиях магниевая среда, селенитовая среда, Мюллер-Кауфман среда, среда Раппопорт-Василиадис.

Непосредственный высев материала из среды обогащения до ее инкубирования в термостате может заменить прямой высев на дифференциально-диагностические среды. Испражнения , доставленные в фосфатно-буферном растворе, высевают в среду обогащения двойной концентрации в соотношении Фекалии, доставленные в глицериновом консерванте или транспортной среде, помещают в обычную среду обогащения в соотношении Испражнения, доставленные без консерванта, суспендируют в среде обогащения в соотношении Из указанных суспензий делают высев на дифференциально-диагностические среды, оставшуюся часть инкубируют в термостате.

Кровь , взятую из вены, высевают в двойную среду. После 16— 20 ч инкубирования делают высев на одну из дифференциально-диагностических сред. При отрицательном результате делают повторные посевы на 3-и, 5-е, 8-е сутки.

Рвотные массы, промывные воды желудка и мочу после центрифугирования высевают в среды обогащения. В случае исследования материала без центрифугирования посев проводят в среду обогащения двойной концентрации в соотношении и после 18—24 ч инкубирования делают высев на дифференциально-диагностические среды.

Каждую фракцию желчи дуоденального содержимого высевают во флаконы со слабощелочным питательным бульоном в соотношении и на дифференциально-диагностические среды. Через 18— 24 ч из флаконов осуществляют повторный высев на дифференциально-диагностические среды.

В случае получения отрицательных результатов высев повторяют на 3 и, 5-, 7-е сутки, используя среды слабой селективности. Операционный и секционный материал высевают в одну из сред обогащения в отношении Допускается одновременный высев суспензии материала в среду обогащения и на дифференциально-диагностические среды. При наличии другого клинического материала его высевают на две-три дифференциально-диагностические среды комбинируя высоко- и низко селективные среды и в емкости со средой обогащения одновременно.

При посеве на плотные среды исследуемый материал наносят с помощью бактериологической петли материал от больных , пипетки, стеклянной палочки или тампона пробы продуктов и смывы с последующим втиранием материала шпателем по всей поверхности среды. На высоко селективные среды посевной материал вносят в большом объеме в 3—5 раз , чем на слабо селективные.

Пластинчатые среды подсушивают, на их поверхности не должна оставаться конденсационная жидкость, что обеспечивает рост изолированных колоний. После инкубирования посевов на средах обогащения делается повторный высев на дифференциально-диагностические среды с последующим отбором подозрительных колоний. Необходимо учитывать, что при исследовании различных материалов на инфицированность сальмонеллами отличаются только начальные этапы анализа правила взятия материала, его обработка, выбор адекватных питательных сред.

Начиная с отбора колоний на дифференциально-диагностических средах, последующие этапы бактериологического исследования идентичны. Объектами исследования могут являться продукты, указанные в СанПиН 2. Каждую пробу снабжают этикеткой с наименованием материала и источника его получения.

При направлении проб продуктов дополнительно указывают, какой из продуктов подозревается в качестве фактора риска. Основными объектами окружающей среды, подлежащими исследованию на наличие сальмонелл, являются смывы с различных предметов на эпидемиологически значимых объектах и в лечебно-профилактических учреждениях, а также вода питьевая, открытых водоисточников, сточная , воздух и почва.

Отбор проб смывов осуществляют стерильными ватными или ватно-марлевыми тампонами. Тампоны монтируют на деревянной палочке или проволоке, пропущенной через пробку, помещают в пробирку и стерилизуют 30 мин. Затем в каждую пробирку наливают 2 мл предварительной среды обогащения - забуференной пептонной воды pH 7,0. Непосредственно перед взятием смыва тампон увлажняют, наклоняя пробирку, излишек влаги отжимают о стенку пробирки.

Смывы берут с площади не менее см 2 , если нет специальных указаний для данного объекта. При взятии смывов с яичной скорлупы один тампон используют для исследования 10 яиц. Для отбора проб воды используют стерильные флаконы вместимостью 0,5 л с притертой, каучуковой или корковой пробкой. Пробы воды питьевой отбирают при соблюдении правил стерильности, после предварительной стерилизации кранов обжиганием пламенем горящего тампона, смоченного спиртом, и последующего спуска воды в течение 10—15 мин при полностью открытом кране.

Пробы должны быть исследованы не позже чем через 2 ч после их отбора. Пробы воды открытых водоемов или сточных вод отбирают в соответствии с МУК 4. Подготовка к исследованию воды необходима при использовании метода мембранной фильтрации при определении наличия в ней сальмонелл. Для этого берутся 2 объема воды по мл каждый. Каждый объем фильтруют через один или несколько мембранных фильтров.

Навеску в 50 г помещают в среду неселективного обогащения в соотношении и дальнейшее исследование выполняют аналогично пищевым продуктам. Отбор проб воздуха. Определение наличия сальмонелл в воздухе проводится по эпидпоказаниям.

Пробы воздуха отбирают аспирационным методом с помощью аппаратов и устройств, разрешенных к применению в установленном порядке. Количество пропущенного воздуха должно составлять дм 3 на одну чашку с дифференциально-диагностической средой. При исследовании воды питьевой, поверхностных водных объектов и сточных вод берутся 2 пробы по мл каждая и вносятся в равный объем селективной среды обогащения двойной концентрации.

При использовании мембранной фильтрации для исследования полученные фильтры помещают в 50 мл в каждой из двух сред накопления, например магниевую и селенитовую, или среду Раппопорт-Василиадис и селенитовую. Затем делают высев на дифференциально-диагностические среды. Дальнейший анализ ведут также как и при выделении сальмонелл из других объектов исследования. Колонии подозрительные на сальмонеллы идентифицируют по той же схеме, что и изолированные из других объектов. После 18—20 часового инкубирования чашек с дифференциально-диагностическими средами висмут-сульфит агар — 48 ч производится учет характера роста с отбором 3—5 подозрительных колоний на одну из сред для первичной идентификации Клиглера, Ресселя, Олькеницкого и на скошенный питательный агар.

В случае чрезвычайной эпидемической ситуации культуру, выросшую на указанных средах, используют для последующей постановки реакции агглютинации. Результаты этой реакции ориентировочны и требуют подтверждения на этапе завершения биохимической идентификации. Определение ферментативных свойств выделенных микроорганизмов.

Если культуры не ферментируют лактозу, не расщепляют мочевину, но ферментируют глюкозу и образуют сероводород, то они подозрительны на принадлежность к роду сальмонелла и подвергаются дальнейшему изучению.

О ферментации лактозы и сахарозы в среде Олькеницкого и ферментации лактозы в среде Клиглера и Ресселя судят по появлению желтой окраски в скошенной части агара, а о ферментации глюкозы — по такому же окрашиванию в столбике. Газообразование устанавливают по наличию пузырьков газа и разрыву агара, а образование сероводорода — по почернению среды. В среде Олькеницкого при росте культуры, гидролизирующей мочевину, среда приобретет диффузный яркий красно-малиновый цвет.

В случае если в результате прямого посева испражнений не выросло ни одной колонии или выросли единичные колонии, необходимо произвести повторный высев, увеличив порцию засеваемого материала. При повторном отсутствии роста следует получить материал для исследования еще раз. У подозрительных культур изучают их ферментативные характеристики, позволяющие определить родовую принадлежность выделенных бактерий. Для этих целей используют тесты, позволяющие определить способность к образованию индола, наличие роста на средах с цитратами, разложение салицина и малоната натрия, наличие лизин-декарбоксилазы, фенилаланиндезаминазы, способность к разложению мочевины, образованию ацетил-метил-карбинола в реакции Фогес-Проскауэра.

Сальмонеллы - группа возбудителей, который вызывают такие кишечные инфекции, как тифы, паратифы и, собственно, сальмонеллез.

Сальмонеллез - кишечная инфекция, вызываемая многочисленными возбудителями из рода сальмонелл, характеризующаяся отчетливо выраженной интоксикационной и желудочно-кишечной симптоматикой. Сальмонеллы хорошо переносят замораживание, высушивание, выживают в воде до двух месяцев, накапливаются в молочных и мясных продуктах, устойчивы к солению, копчению, маринадам.

При кипячении быстро разрушаются. Основными источниками инфекции являются животные, изредка люди. Длительность скрытого течения сальмонеллеза у животных может продолжаться годами. Бессимптомное течение заболевания установлено у многих видов сельскохозяйственных животных, кошек, собак, грызунов, птиц.

Основной путь заражения - пищевой, при этом факторами передачи инфекции могут быть различные пищевые продукты - мясо млекопитающих, птиц, рыба, яйца и яичные продукты, молоко и молочные продукты и др. Второй путь передачи инфекции - водный, где фактором передачи является вода открытых водоемов или водопроводная вода в условиях аварийных ситуаций. Сальмонеллы, преодолевшие барьер желудка, быстро внедряются в слизистую оболочку тонкой кишки.

Жизнедеятельность сальмонелл в слизистой оболочке кишки сопровождается продукцией токсинов, которые и обусловливают развитие диарейной, болевой и интоксикационной симптоматики. Инкубационный период при сальмонеллезе колеблется от 6 часов до суток, составляя в среднем часа.

Часто заболевание начинается остро: озноб, повышение температуры до С, головная боль, слабость, недомогание, схваткообразные боли в животе, тошнота и рвота. Стул жидкий, водянистый, пенистый, зловонный, зеленоватого цвета от 5 до 10 раз в сутки. На й день болезни у части больных в стуле обнаруживается примесь слизи и редко крови. Продолжительность заболевания в большинстве случаев от 2 до 10 суток.

К осложнениями относятся перитонит , токсическое расширение кишки, реактивный полиартрит, инфекционно-токсический и дегидратационный шоки. Тифоподобный вариант сальмонеллеза обычно начинается с признаков поражения желудочно-кишечного тракта, однако может с самого начала протекать и без расстройства функции кишечника.

Продолжительность лихорадки колеблется от дней до недель. Температура нередко достигает С. Кожные покровы больных бледны, иногда на животе и туловище обнаруживаются элементы сыпи. Для подтверждения диагноза сальмонеллеза необходимы бактериологическое и серологическое исследования. Материалом для бактериологического исследования служат кровь, испражнения, моча, рвотные массы, промывные воды желудка, желчь, гной из очагов воспаления.

Для обнаружения антител используют реакцию непрямой гемагглютинации. Минимальный диагностический титр - Стационарное лечение сальмонеллеза показано при среднетяжелых и тяжелых формах болезни, детям раннего возраста, пожилым людям. Профилактика сальмонеллеза направлена на предупреждение распространения заболевания среди домашних животных, соблюдение санитарного режима на предприятиях пищевой промышленности и общественного питания.

Решающее значение при этом имеет механизация и автоматизация технологических процессов на предприятиях, изготавливающих продукты питания. Источник: diagnos. Лекарства Статьи Онлайн-консультации.

Проявления сальмонеллеза Инкубационный период при сальмонеллезе колеблется от 6 часов до суток, составляя в среднем часа. Диагностика Для подтверждения диагноза сальмонеллеза необходимы бактериологическое и серологическое исследования. Лечение сальмонеллеза. Профилактика Профилактика сальмонеллеза направлена на предупреждение распространения заболевания среди домашних животных, соблюдение санитарного режима на предприятиях пищевой промышленности и общественного питания.

Читайте также Сальмонеллез. Сальмонеллез: лечение и профилактика.

ВИДЕО ПО ТЕМЕ: Что нужно знать о симптомах и методах лечения сальмонеллеза